Pipetty電動移液器在豬藍耳病毒檢測(RT-PCR)中的應用_abio生物試劑品牌網
方案摘要:豬繁殖與呼吸綜合征,是由病毒(PRRSV)感染豬引起的一種高度傳染性疫病,臨床表現為母豬繁殖系統障礙,斷奶仔豬消瘦、生長遲緩以及死亡率增加。該病能引起豬體溫升高、呼吸困難,導致豬耳朵發紺,又稱藍耳病,針對 PRRSV RT-PCR 檢測中樣本前處理易損失、反應體系配制易污染、批量操作效率低等問題,通過 PIpetty 電動移液器的高精度、防污染及自動化功能,實現 RNA 回收率提升、交叉污染降低、檢測周期縮短,保障檢測結果的準確性與可重復性。
方案詳情:
一、實驗原理
核心為 “逆轉錄 + PCR 擴增”:先以逆轉錄酶將病毒 RNA 轉為 cDNA(解決 PCR 不能擴 RNA 的問題),再用 PRRSV 特異性引物和酶,通過循環讓 cDNA 指數級復制,最后憑特異性熒光信號或 DNA 條帶判斷結果(有則陽性、無則陰性),整體具有高特異、高敏感的特點。
二、? 實驗準備
1、設配和材料
① Pipetty電動移液器MSIC01-03-250、MSIC01-02-1000及配套吸頭;
② PCR 儀;
③ 高速臺式冷凍離心機(4℃,離心速度 12 000 r/min 以上);
④ 穩壓穩流電泳儀和水平電泳槽;
⑤ 凝膠成像系統;
⑥ 混勻器;
⑦ 冰箱(2℃~8℃、-20 ℃和-70 ℃);
⑧ 組織研磨器。
2、試劑和材料
① PBS液;
② 商品化的 RNA 提取裂解液;
③ 三氯甲烷;
④ 異丙醇(-20℃預冷);
⑤ DEPC 水;
⑥ 75%乙醇;
⑦ M-MLV 反轉錄酶(10 U/μL);
⑧ 5XRT 緩沖液;
⑨ RNA 酶抑制劑(40 U/μL);
⑩ Tag 酶(10 U/L);
? 10XPCR 緩沖液;
? dNTPS(含 dATP、dTTP、dCTP、dGTP,各 10 mmol/L);
? 10xMgCl 2( 25 mmol/L);
? 甘油或礦物油;
? 引物;
? 5×TBE 電泳緩沖液;
? EB 溶液;
? 電泳上樣緩沖液:100 mL 溶液中含 0.25g溴酚藍及 40g蔗糖。
三、實驗步驟
1、樣本總 RNA 的提取
a) 取滅菌的 1.5 mL離心管,基于樣本數量進行編號。每管加入 600 μL 細胞裂解液,使用Pipetty電動移液器,設置連續分液功能,然后分別加入被檢樣本、陰性對照、陽性對照、空白對照(無核酸酶水)各 200μL,每加一份樣本換用一個吸頭,再各加入 200 μL 三氯甲烷,在混勻器上振蕩混勻5 s。于4 ℃經 12 000 r/min 離心 15 min。
b) 取相同數量滅菌的 1.5 mL離心管,加入 500μL異丙醇。吸取各管中的上清液(至少 500 μL)轉移至相應的管中,并顛倒混勻。
c) 于4 ℃經 12 000 r/min 離心 15 min,小心倒去上清液,倒置于吸水紙上吸干液體,然后加入600 μL 75%乙醇進行洗滌。
d) 于4 ℃、12 000 r/min 離心 10 min,小心倒去上清液,倒置于吸水紙上吸干液體。
e) 64 000 r/min 離心 10 s,將管壁上的殘余液體甩至管底部,用微量移液器吸干液體,室溫干燥3 min。
f) 使用Pipetty連續分液模式,加入 11 μL DEPC水,混勻模式,自動混勻,以溶解管壁上的 RNA,2 000 r/min 離心5s,置于冰上備用。提取的 RNA 應在 2h內進行 RT-PCR 擴增,否則應置于-70 ℃冰箱保存。
2、反轉錄(RT)
反應液總量 20 μL。依次在 RT 反應管中加入 RNA 模板和試劑:
b) 將表1中的試劑充分混勻,4 000 r/min 離心 30 s。PCR 的反應條件:94 ℃預變性 5 min;94 ℃變性 30 s,55 ℃退火 40 s,72 ℃延伸 50 s,35 個循環;72 ℃終延伸 10 min。擴增反應結束后,進行擴增產物的瓊脂糖凝膠電泳。
若采用一步法 RT-PCR,則省略反轉錄,用提取的 RNA 直接進行反應。一步法 RT-PCR 反應體系見表2。
一步法 RT-PCR 的反應條件:50 ℃反轉錄 30 min;94 ℃預變性5 min;94 ℃變性 30 s,55 ℃退火40 s,72 ℃延伸 50 s,35 個循環;72 ℃終延伸 10 min。
4、用 TBE 電泳緩沖液配制 1.5%的瓊脂糖(含 0.5 μg/mL EB)凝膠。將凝膠放入水平電泳槽,使電泳緩沖液剛好淹沒膠面,將6μL PCR 擴增產物和2μL電泳上樣緩沖液混勻后加入樣本孔。電泳時應設立 DNA Marker 對照。按5 V/cm 進行電泳 20 min~30min。電泳結束后,將瓊脂糖凝膠置于凝膠成像系統中觀察結果。
四、結果判定
1、試驗成立條件:PRRSV-1(歐洲型)陽性對照有大小為 398 bp的特異性擴增條帶;PRRSV-2(美洲型)陽性對照有大小為 433 bp的特異性擴增條帶;陰性對照和空白對照無任何擴增條帶。
2、被檢樣本有大小為 398 bp的特異性擴增條帶,且與陽性對照條帶大小相符,則判為 PRRSV-1核酸陽性。
3、被檢樣本有大小為 433 bp的特異性擴增條帶,且與陽性對照條帶大小相符,則判為 PRRSV-2核酸陽性。
4、被檢樣本同時有大小為 398 bp和 433 bp的特異性擴增條帶,且與陽性對照條帶大小相符,則判為 PRRSV-1 和 PRRSV-2 核酸陽性。
5、被檢樣本無大小為 398 bp 或 433 bp 特異性的擴增條帶,則樣本判為 PRRSV 核酸陰性。必要時,可取 RT-PCR 擴增產物進行序列測定,并與已公開發表的 PRRSV 特異性片段序列進行同源性比對分析,以確證檢測結果。

方案詳情:
一、實驗原理
核心為 “逆轉錄 + PCR 擴增”:先以逆轉錄酶將病毒 RNA 轉為 cDNA(解決 PCR 不能擴 RNA 的問題),再用 PRRSV 特異性引物和酶,通過循環讓 cDNA 指數級復制,最后憑特異性熒光信號或 DNA 條帶判斷結果(有則陽性、無則陰性),整體具有高特異、高敏感的特點。
二、? 實驗準備
1、設配和材料
① Pipetty電動移液器MSIC01-03-250、MSIC01-02-1000及配套吸頭;
② PCR 儀;
③ 高速臺式冷凍離心機(4℃,離心速度 12 000 r/min 以上);
④ 穩壓穩流電泳儀和水平電泳槽;
⑤ 凝膠成像系統;
⑥ 混勻器;
⑦ 冰箱(2℃~8℃、-20 ℃和-70 ℃);
⑧ 組織研磨器。

2、試劑和材料
① PBS液;
② 商品化的 RNA 提取裂解液;
③ 三氯甲烷;
④ 異丙醇(-20℃預冷);
⑤ DEPC 水;
⑥ 75%乙醇;
⑦ M-MLV 反轉錄酶(10 U/μL);
⑧ 5XRT 緩沖液;
⑨ RNA 酶抑制劑(40 U/μL);
⑩ Tag 酶(10 U/L);
? 10XPCR 緩沖液;
? dNTPS(含 dATP、dTTP、dCTP、dGTP,各 10 mmol/L);
? 10xMgCl 2( 25 mmol/L);
? 甘油或礦物油;
? 引物;
? 5×TBE 電泳緩沖液;
? EB 溶液;
? 電泳上樣緩沖液:100 mL 溶液中含 0.25g溴酚藍及 40g蔗糖。

三、實驗步驟
1、樣本總 RNA 的提取
a) 取滅菌的 1.5 mL離心管,基于樣本數量進行編號。每管加入 600 μL 細胞裂解液,使用Pipetty電動移液器,設置連續分液功能,然后分別加入被檢樣本、陰性對照、陽性對照、空白對照(無核酸酶水)各 200μL,每加一份樣本換用一個吸頭,再各加入 200 μL 三氯甲烷,在混勻器上振蕩混勻5 s。于4 ℃經 12 000 r/min 離心 15 min。

b) 取相同數量滅菌的 1.5 mL離心管,加入 500μL異丙醇。吸取各管中的上清液(至少 500 μL)轉移至相應的管中,并顛倒混勻。
c) 于4 ℃經 12 000 r/min 離心 15 min,小心倒去上清液,倒置于吸水紙上吸干液體,然后加入600 μL 75%乙醇進行洗滌。
d) 于4 ℃、12 000 r/min 離心 10 min,小心倒去上清液,倒置于吸水紙上吸干液體。
e) 64 000 r/min 離心 10 s,將管壁上的殘余液體甩至管底部,用微量移液器吸干液體,室溫干燥3 min。
f) 使用Pipetty連續分液模式,加入 11 μL DEPC水,混勻模式,自動混勻,以溶解管壁上的 RNA,2 000 r/min 離心5s,置于冰上備用。提取的 RNA 應在 2h內進行 RT-PCR 擴增,否則應置于-70 ℃冰箱保存。

2、反轉錄(RT)
反應液總量 20 μL。依次在 RT 反應管中加入 RNA 模板和試劑:
- RNA 模板:提取樣本的總 RNA 5 μL
- 下游引物 P2 1 μL
- 5XRT緩沖液 4 μL
- 10 mmol/l dNTPs 2 μL
- RNA 酶抑制劑 1 μL
- M-MLV 反轉錄酶 1 μL
- DEPC水 6 μL
- PCR擴增,
- PCR反應體系見表1。

b) 將表1中的試劑充分混勻,4 000 r/min 離心 30 s。PCR 的反應條件:94 ℃預變性 5 min;94 ℃變性 30 s,55 ℃退火 40 s,72 ℃延伸 50 s,35 個循環;72 ℃終延伸 10 min。擴增反應結束后,進行擴增產物的瓊脂糖凝膠電泳。
若采用一步法 RT-PCR,則省略反轉錄,用提取的 RNA 直接進行反應。一步法 RT-PCR 反應體系見表2。

一步法 RT-PCR 的反應條件:50 ℃反轉錄 30 min;94 ℃預變性5 min;94 ℃變性 30 s,55 ℃退火40 s,72 ℃延伸 50 s,35 個循環;72 ℃終延伸 10 min。
4、用 TBE 電泳緩沖液配制 1.5%的瓊脂糖(含 0.5 μg/mL EB)凝膠。將凝膠放入水平電泳槽,使電泳緩沖液剛好淹沒膠面,將6μL PCR 擴增產物和2μL電泳上樣緩沖液混勻后加入樣本孔。電泳時應設立 DNA Marker 對照。按5 V/cm 進行電泳 20 min~30min。電泳結束后,將瓊脂糖凝膠置于凝膠成像系統中觀察結果。
四、結果判定
1、試驗成立條件:PRRSV-1(歐洲型)陽性對照有大小為 398 bp的特異性擴增條帶;PRRSV-2(美洲型)陽性對照有大小為 433 bp的特異性擴增條帶;陰性對照和空白對照無任何擴增條帶。
2、被檢樣本有大小為 398 bp的特異性擴增條帶,且與陽性對照條帶大小相符,則判為 PRRSV-1核酸陽性。
3、被檢樣本有大小為 433 bp的特異性擴增條帶,且與陽性對照條帶大小相符,則判為 PRRSV-2核酸陽性。
4、被檢樣本同時有大小為 398 bp和 433 bp的特異性擴增條帶,且與陽性對照條帶大小相符,則判為 PRRSV-1 和 PRRSV-2 核酸陽性。
5、被檢樣本無大小為 398 bp 或 433 bp 特異性的擴增條帶,則樣本判為 PRRSV 核酸陰性。必要時,可取 RT-PCR 擴增產物進行序列測定,并與已公開發表的 PRRSV 特異性片段序列進行同源性比對分析,以確證檢測結果。
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