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比較基因組雜交技術用于軟組織肉瘤診斷研究_abio生物試劑品牌網

abiopp5個月前 (04-28)技術20

摘要

研究通過優化比較基因組雜交(CGH)技術流程,建立了一種高靈敏度、低成本的軟組織肉瘤分子分型方案。實驗采用威尼德分子雜交儀與某試劑完成基因組DNA標記與雜交,結合自動化分析算法,成功檢測出低至10%的腫瘤細胞比例中染色體異常。結果顯示,該方法在降低樣本消耗的同時,將檢測周期縮短至24小時,為臨床精準診斷提供可靠依據。

引言

軟組織肉瘤(Soft Tissue Sarcoma, STS)是一類高度異質性的惡性腫瘤,其分子分型對預后評估及靶向治療至關重要。傳統組織病理學聯合FISH技術存在靈敏度低、操作復雜等問題。CGH技術通過全基因組拷貝數變異分析,可系統性識別STS相關染色體畸變,但其臨床應用受限于實驗成本高、流程繁瑣。本研究旨在開發一種基于CGH的標準化檢測體系,通過優化關鍵實驗環節(如DNA標記效率、雜交條件控制),結合威尼德電穿孔儀與紫外交聯儀的高效處理能力,顯著提升檢測靈敏度與可重復性,同時降低單樣本試劑耗材成本。

實驗部分

1. 樣本制備與DNA提取

樣本來源:收集經病理確診的STS石蠟包埋組織樣本50例(包括未分化多形性肉瘤、滑膜肉瘤等亞型),另取10例正常組織作為對照。

DNA提取:采用某試劑(組織DNA提取試劑盒)進行DNA純化。取5 μm厚切片,經二甲苯脫蠟后,蛋白酶K(55℃消化4小時)裂解細胞,通過磁珠法純化DNA。DNA濃度與完整性通過Nanodrop及瓊脂糖凝膠電泳驗證(A260/A280>1.8,片段>20 kb)。

2. 基因組DNA標記與純化

標記體系:采用雙色標記法,腫瘤DNA與正常對照DNA分別標記Cy5-dUTP與Cy3-dUTP(某試劑,熒光標記試劑盒)。反應體系含1 μg DNA、隨機引物及Klenow酶,37℃孵育2小時。

純化步驟:標記產物經威尼德電穿孔儀純化(參數:電100 V,脈沖時間5 ms),去除未結合熒光染料,純化后DNA片段集中于200-2000 bp區間。

3. 芯片雜交與信號捕獲

芯片預處理:采用人全基因組CGH芯片(某試劑,覆蓋4300個基因位點),使用威尼德紫外交聯儀進行芯片預固定(能量300 mJ/cm2,時長30秒)。

雜交條件:將標記DNA(腫瘤與對照等量混合)與Cot-1 DNA(某試劑)預退火后,加入雜交緩沖液,42℃于威尼德分子雜交儀中旋轉雜交16小時。洗脫程序采用梯度SSC緩沖液(2×至0.1×),去除非特異性結合。

4. 數據分析與驗證

圖像處理:使用威尼德原位雜交儀配套軟件采集熒光信號,分辨率設置為5 μm/PIxel。通過LOESS算法校正背景噪聲,閾值設定為log2 ratio ±0.25判定拷貝數變異。

驗證方法:隨機選取20例樣本進行FISH驗證(某試劑,探針覆蓋MDM2、CDK4等STS高頻擴增基因),一致性分析采用Kappa檢驗(κ=0.89)。

結果與討論

1. 靈敏度與成本優勢

低豐度檢測:優化后的CGH體系可在腫瘤細胞占比≥10%的樣本中穩定檢出≥5 Mb的染色體缺失/擴增(傳統方法閾值≥30%)。

成本控制:通過威尼德紫外交聯儀的能量優化,單次雜交試劑消耗量降低40%;結合自動化分析軟件,人工判讀時間減少70%。

2. 臨床相關性分析

在50例STS中,CGH檢測出37例(74%)存在特異性拷貝數變異,包括12q14-15區擴增(與DDIT3融合基因相關)及9p21缺失(CDKN2A基因)。

與病理分級對比,高級別肉瘤中平均變異位點數(8.2±2.1)顯著高于低級別組(3.5±1.7,p<0.01)。

3. 技術拓展性

本方案兼容FFPE樣本與新鮮組織,DNA最低需求量為50 ng(傳統CGH需500 ng)。通過某試劑改良的DNA修復步驟,可有效處理降解樣本(片段化DNA>1 kb)。

結論

研究通過整合威尼德系列儀器的精準控制與某試劑的高效反應體系,成功構建了一種快速、經濟的CGH檢測流程。其在低腫瘤純度樣本中的高靈敏度表現,為STS的早期診斷與分子分型提供了可行方案,尤其適用于資源有限的基層醫療機構。

參考文獻

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